Использование плодов различного срока хранения в исследовании плоидности и содержания ДНК Peucedanum vaginatum Ledeb. (Umbelliferae Juss.) методом проточной цитометрии
УДК 576.3:582.893
Аннотация
На примере Peucedanum vaginatum рассмотрены методические вопросы, связанные с возможностью использования плодов зонтичных разного срока хранения в проточной цитометрии для определения размера генома и уровней плоидности. Особенности строения плодов определяют конфигурацию сигнала флуоресценции, когда на гистограммах преобладающий пик соответствует триплоидному эндосперму, занимающему большую часть семени, а слабый – диплоидному маленькому зародышу. Семенная оболочка и срастающийся с ней околоплодник, будучи сухими и состоящими из мертвых клеток, в формировании сигнала не участвуют. С увеличением срока хранения падает число регистрируемых событий, исчезает пик зародыша и возрастают отклонения в значениях показателя размера генома до 27 %, поэтому информация о содержании ДНК должна рассматриваться только как ориентировочная и может быть использована для оценки уровня плоидности. Тем не менее, возможность использования гербарного материала со зрелыми плодами, срок хранения которого может превышать 100 лет, обеспечивает кариологические исследования широкой выборкой и масштабным географическим охватом.
Скачивания
Литература
Ростовцева Т. С. Числа хромосом ряда видов семейства Apiaceae на юге Сибири // Бот. журн., 1976. – Т. 61. – № 1. – С. 93–99.
Скапцов М. В., Куцев М. Г. Возможности проточной цитометрии в современной науке о растениях // Проблемы ботаники Южной Сибири и Монголии, 2014. – Т. 13. – C. 204–207.
Скапцов М. В., Смирнов С. В., Куцев М. Г., Шмаков А. И. Проблемы стандартизации в проточной цитометрии растений // Turczaninowia, 2016. – Т. 19. – № 3. – С. 120–122. https://doi.org/10.14258/turczaninowia.19.3.9
Čertner M., Lučanová M., Sliwinska E., Kolář F., Loureiro J. Plant material selection, collection, preservation, and storage for nuclear DNA content estimation // Cytometry Part A, 2022. – Vol. – 101. – N 9. – P. 737–748. https://doi.org/10.1002/cyto.a.24482
Daushkevich J. V., Alexeeva T. V., Pimenov M. G. IOPB chromosome data 10 // Int. Org. Pl. Biosyst. Newsletter, 1995. – Vol. 25. – P. 7–8.
Doležel J., Bartos J. Plant DNA flow cytometry and estimation of nuclear genome size // Ann. Bot., 2005. – Vol. 95. – N 1. – P. 99–110. https://doi.org/10.1093/aob/mci005
Doležel J., Greilhuber J., Lucretti S., Meister A., Lysák M., Nardi L., Obermayer R. Plant genome size estimation by flow cytometry: inter-laboratory comparison // Ann. Bot., 1998. – Vol. 82. – P. 17–26. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.aob. a010312
Doležel J., Greilhuber J., Suda J. Flow cytometry with plants: an overview // Flow cytometry with plant cells. – Weinheim: Wiley-VCH., 2007. – P. 41–66. https://doi.org/10.1002/9783527610921.ch3
Haig D. Poles apart: monosporic, bisporic and tetrasporic embryo sacs revisited // Front. Ecol. Evol., 2020. – Vol. 8. https://doi.org/10.3389/fevo.2020.516640
Pfosser M., Heberle-Bors E., Amon A., Lelley T. Evaluation of sensitivity of flow cytometry in detecting aneuploidy in wheat using disomic and ditelosomic wheat–rye addition lines // Cytometry Part A, 1995. – Vol. 21. – N 4. – P. 387–393. https://doi.org/10.1002/cyto.990210412
Ptáček J., Sklenář P., Pinc J., Urfusová R., Calviño C. I., Urfus T. A pentaploid endosperm and a Penaea-type embryo sac are likely synapomorphies of Azorella (Apiaceae, Azorelloideae) // Pl. Syst. Evol., 2022. – Vol. 308. – P. 1–10. https://doi.org/10.1007/s00606-022-01833-z
Skaptsov M. V., Kutsev M. G., Smirnov S. V., Vaganov A. V., Uvarova O. V., Shmakov A. I. Standards in plant flow cytometry: an overview, polymorphism and linearity issues // Turczaninowia, 2024. – Vol. 27. – N 2. – P. 86–104. https://doi.org/10.14258/turczaninowia.27.2.10
Sliwinska E., Zielinska E., Jedrzejczyk I. Are seeds suitable for flow cytometric estimation of plant genome size? // Cytometry Part A, 2005. – Vol. 64. – P. 72–79.
