ХИМИЧЕСКОЕ ПРОФИЛИРОВАНИЕ PAPAVER KUVAJEVII: ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОДЕРЖАНИЯ ТАКСИФИЛЛИНА – ОСНОВНОГО ЦИАНОГЕННОГО ГЛИКОЗИДА
Аннотация
Комплекс растительных метаболитов как набор определенных веществ может быть охарактеризован химическими и физико-химическими методами анализа. Химическая характеристика подразумевает выявление набора отдельных веществ – химических маркеров, уникальных для выбранного растительного объекта, и всего видимого набора компонентов как характеристического профиля – «химического отпечатка пальцев».
Объект исследования – мак Куваева (Papaver kuvajevii). Новый вид мака, описан в 2003 году. Эндемик. Многолетник. Растет в степном поясе на склонах гор, скалах, осыпях, закустаренных степях. Цветет в мае – августе. Размножение семенное, июнь – сентябрь.
В данной работе разработана схема экстракционных процедур для спектроскопического профилирования мака Куваева (Papaver kuvajevii): измельченную воздушно-сухую надземную часть растения (без коробочек) экстрагировали в аппарате Сокслета последовательно растворителями (в порядке увеличения их полярности). Для каждого экстракта были зафиксированы ИК-, ЯМР 1Н и 13С профили. Методом количественного ЯМР-анализа (q-NMR) определено содержание таксифиллина в образце.
Скачивания
Metrics
Литература
World Health Organization WHO Library Cataloguing-in-Publication Data – s.l.: Quality control methods for herbal materials, 1998.
Giri L., Andola H.C., Kant Purohit V., Rawat M.S.M., Rawal R.S., Bhatt I.D. Chromatographic and spectral finger-printing standardization of traditional medicines: An overview as modern tools // Research Journal of Phytochemistry. 2010. Vol. 4. N4. Pp. 234–241.
Tistaert C., Dejaegher B., Heyden Y.V. Chromatographic separation techniques and data handling methods for herbal fingerprints: A review // Analytica Chimica Acta. 2011. Vol. 690. Pp. 148–161.
Wu H., Guo J., Chen S., Liu X., Zhou Y., Zhang X., Xu X. Recent developments in qualitative and quantitative analysis of phytochemical constituents and their metabolites using liquid chromatography–mass spectrometry // Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 2013. Vol. 72. Pp. 267–291.
Krishnan P., Kruger N.J., Ratcliffe R.G. Metabolite fingerprinting and profiling in plants using NMR // Journal of Experimental Botany. 2005. Vol. 56. Pp. 255–265.
Colquhoun I.J. Use of NMR for metabolic profiling in plant systems // Journal of Pesticide Science. 2007. Vol. 32. Pp. 200–212.
Kim H.K., Choi Y.H., Verpoorte R. NMR-based metabolomic analysis of plants // Nature protocols. 2010. Vol. 5. Pp. 536–549.
Eisenreich W., Bacher A. Advances of high-resolution NMR techniques in the structural and metabolic analysis of plant biochemistry // Phytochemistry. 2007. Vol. 68. Pp. 2799–2815.
Shaulo D., Sonnikova A. A new species of the genus Papaver L. (Papaveraceae) from the Western Sayan // Turczani-nowia. 2003. Vol. 6. N4. Pp. 5–6.
Korotkikh M.O., Pankrushina N.A., Sal'nikova O.I., Sonnikova A.E. Alkaloids from the new species Papaver kuvajevii // Chemistry of Natural Compounds. 2015. Vol. 51. Pp. 803–804.
Sotirhos N., Herslof B., Kenne L. Quantitative analysis of phospholipids by 31P-NMR // Journal of Lipid Research. 1986. Vol. 27. Pp. 386–392.
Hatzakis E., Koidis A., Boskou D., Dais P. Determination of Phospholipids in Olive Oil by 31P NMR Spectroscopy // Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2008. Vol. 56. Pp. 6232–6240.
Miller R.E., Tuck K.L. Reports on the distribution of aromatic cyanogenic glycosides in Australian tropical rainforest tree species of the Lauraceae and Sapindaceae // Phytochemistry. 2013. Vol. 92. Pp. 146–152.
Chang J., Zhang Y. Catalytic degradation of amygdalin by extracellular enzymes from Aspergillus niger // Process Biochemistry. 2012. Vol. 47. Pp. 195–200.
Mao C.-H., Blocher J., Anderson L., Smith D. Cyanogenesis in Sorghum vulgare – I.: An improved method for the iso-lation of dhurrin; physical properties of dhurrin // Phytochemistry. 1965. Vol. 4. Pp. 297–303.
Seigler D.S., Pauli G.F., Fröhlich R.,Wegelius E., Nahrstedt A., Glander K.E., Ebinger J.E. Cyanogenic glycosides and menisdaurin from Guazuma ulmifolia, Ostrya virginiana, Tiquilia plicata, and Tiquilia canescens // Phytochemistry. 2005. Vol. 66. Pp. 1567–1580.
Pauli G.F. qNMR – a versatile concept for the validation of natural product reference compounds // Phytochemical Analysis. 2001. Vol. 12. Pp. 28–42.
Wishart D.S. Quantitative metabolomics using NMR TrAC // Trends in Analytical Chemistry. 2008. Vol. 27. Pp. 228–237.
Chauthe S.K., Sharma R.J., Aqil F., Gupta R.C., Singh I.P. Quantitative NMR: An Applicable Method for Quantitative Analysis of Medicinal Plant Extracts and Herbal Products // Phytochemical Analysis. 2012. Vol. 23. Pp. 689–696.
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Авторы, которые публикуются в данном журнале, соглашаются со следующими условиями:
1. Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и передают журналу право первой публикации вместе с работой, одновременно лицензируя ее на условиях Creative Commons Attribution License, которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным указанием авторства данной работы и ссылкой на оригинальную публикацию в этом журнале.
2. Авторы сохраняют право заключать отдельные, дополнительные контрактные соглашения на неэксклюзивное распространение версии работы, опубликованной этим журналом (например, разместить ее в университетском хранилище или опубликовать ее в книге), со ссылкой на оригинальную публикацию в этом журнале.
3. Авторам разрешается размещать их работу в сети Интернет (например, в университетском хранилище или на их персональном веб-сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению, а также к большему количеству ссылок на данную опубликованную работу.
