ЖИРНОКИСЛОТНЫЙ СОСТАВ ЛИПИДОВ КАЛЛУСОВ ДВУХ ВИДОВ ЛИСТВЕННИЦЫ (LARIX GMELINII И LARIX SIBIRICA)

  • Сергей Петрович Макаренко Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
  • Владимир Николаевич Шмаков Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
  • Татьяна Александровна Коненкина Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
  • Любовь Виссарионовна Дударева Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
  • Юрий Михайлович Константинов Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
Ключевые слова: Larix gmelinii, Larix sibirica, каллусы, жирные кислоты, десатуразы, ∆5-полиметилен¬разделенные кислоты

Аннотация

Методом газожидкостной хроматографии изучен жирнокислотный состав липидов каллусов лиственницы Гмелина (L. gmelinii) и лиственницы сибирской (L. sibirica). Жирнокислотный состав липидов каллусов характеризовался высоким содержанием ненасыщенных жирных кислот, составляющих для L. gmelinii 57,7% и для L. sibirica 59,9%, среди которых линолевая и олеиновая составляла 24,5 и 11,2% для L. gmelinii. и 26,6 и 14,8% для L. sibirica соответственно В составе липидов каллусов L.gmtlinii содержание ∆5-UPIFA составляло 12,3%, для L. Sibirica – 11,2%. В составе ∆5-UPIFA липидов каллусов лиственницы обоих видов содержание пиноленовой кислоты (∆5,9,12–18:3) составляло 6%. Содержание длинноцепочных насыщенных С20:0, С22:0, С23:0, С24:0 кислот составляло для каллусов L. gmelinii 11,4%, для L. sibirica – 9,1%.

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Биографии авторов

Сергей Петрович Макаренко, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
старший научный сотрудник, кандидат биологических наук, тел.: (3952) 42-58-92
Владимир Николаевич Шмаков, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
старший научный сотрудник, кандидат биологических наук
Татьяна Александровна Коненкина, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
ведущий технолог
Любовь Виссарионовна Дударева, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
заведующая лабораторией фи зико-химических методов исследований, кандидат биологических наук
Юрий Михайлович Константинов, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, ул. Лермонтова, 132, Иркутск, 664033
заведующий лабораторией генетической инженерии растений, доктор биоргических наук, профессор

Литература

Ohlorogg J., Browse J. Lipid Biosynthesis // Plant Cell. 1995. Vol. 7. Pp. 957–970.

Wang Z., Benning C. Chloroplast lipids synthesis and lipid trafficking through ER-plastid membrane contact sites // Bioсhem. Soc. Trans. 2012. Vol. 40. Pp. 457–463.

Schultz D.J., Suh M.C., Ohlrogge J. Stearoyl-acyl carrier protein and unusual acyl-acyl carrier protein desaturase ac-tivities are differentially influenced by ferrodoxin // Plant Physiol. 2000. Vol. 124. Pp. 681–692.

Kang J., Snapp A.R., Lu C. Identification of three genes encoding microsomal oleate desaturases (FAD2) from the oilseed crop Camelina sativa // Plant Physiology and Biochemistry. 2011. Vol. 49. Pp. 223–229.

Theocharis A., Clement C., Barka E.A. Physiological and molecular changes in plants grow at low temperatures // Planta. 2012. Vol. 235. Pp. 1091–1105.

Roman A., Andreu V., Hernandez M.L., Lagunas B., Picorel R., Martinez-Rivas J.M., Alfonso M. Contribution of the dif-ferent omega-3 fatty acid desaturase genes to the cold response in soybean // J. Exp. Bot. 2012. Vol. 63. Pp. 4973–4982.

Sayanova O., Ruiz-Lopez N., Haslam R. P., Napier J.A.Role of Δ6-desaturase acyl-carrier specificity in the efficient synthesis of long-chain polyunsaturated fatty acids in transgenic plants // Plant Biotechnology J. 2012. Vol. 10. Pp. 195–206.

Астахова Н.В., Дёмин И.Н., Нарайкина Н.В., Трунова Т.И. Влияние гена desA delta12-ацил-липидной десату-разы на структуру хлоропластов и устойчивость к гипотермии растений картофеля // Физиология растений. 2011. Т. 58. С. 21–27.

Cao S., Zhou X.R., Wood C.C., Green A.G., Singh S.P., Liu L, Liu Q. A large and functionally diverse family of Fad2 genes in safflower (Carthamus tinctorius L.) // BMC Plant Biol. 2013. Vol. 13. Pp. 1–18.

Napier J.A., Michaelson L.V., Dunn T.M. A new class of lipid desaturase central to sphingolipid biosynthesis and signaling // Trend Plant Sci. 2002. Vol. 7. Pp. 475–478.

Wolff R.L., Lavialle O., Pedrono F., Pasquier E., Destaillats F., Marpeau A., Angers P., Aitzetmuller K. Abietoid seed fatty acid compositions - a review of the genera Abies, Cedrus, Hesperopeuce, Keteleeria, Pseudolarix, Tsuga and preliminary inferences on the taxonomy of Pinaceae // Lipids. 2002. Vol. 37. Pp. 17–26.

Meesapyodsuk D., Qiu X. The front-end desaturase: structure, function, evolution and biotechnological use // Lipids. 2012. Vol. 47(3). Pp. 227–237.

Williams M., Sanchez J., Hann A.C., Harwood J.L. Lipid Biosynthesis in Olive Cultures Lipid Biosynthesis // J. Exp. Bot. 1993. Vol. 44. Pp. 1717–1723.

Salas J., Canchez J., Ramli U.S., Manal A.M., Williams M., Harwood J .L. Biochemistry of Lipid Metabolism in olive and other oil fruits // Prog. Lipid Res. 2000. Vol. 39. Pp. 151–180.

Hernandez M.L., Guschina I.A., Martinez-Rivas J.V., Mancha M., Harwood J.L. The utilization and desaturation of oleate and linoleate during glycerolipid biosynthesis in olive (Olea europaea L.) callus culture // J. Exp. Bot. 2008. Vol. 59. Pp. 2425–2435.

Ramli U.S., Salas J.J., Quant P.A., Harwood J.L. Use of metabolic control analysis to give guantitative information on control of lipid biosynthesis in the important oil crop, Elaeis guineesis (oilpalm) // New Phytologist. 2009. Vol. 184. Pp. 330–339.

Тимофеева О.А., Румянцева Н.И. Культура клеток и тканей растений. Казань, 2012. С. 1–91.

Третьякова Н.И., Ижболдина М.В. Индукция соматического эмбриона у кедра сибирского// Лесоведение. 2009. №5. С. 43–49.

Саляев Р.К., Рекославская Н.И. Получение каллусной культуры клеток кедра сибирского // Лесоведение. 2009. №5. 57–62.

Макаренко С.П., Константинов Ю.М., Шмаков В.Н., Хотимченко С.В. Коненкина Т.А. Жирнокислотный со-став липидов лиственницы Гмелина (Larix gmelinii (Rupr). Rupr.) // Биологически мембраны. 2005. Т. 52. С. 343–348.

Макаренко C.П., Константинов Ю.М., Шмаков В.Н., Коненкина Т.А. Жирнокислотный состав липидов каллу-сов двух видов сосны Pinus sibirica и Pinus slvestris // Физиология растений. 2010. Т. 57. С. 790–794.

Murashige T., Scoog F. A Revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue cultures // Plant Physiol. 1962. Vol. 15. Pp. 473–497.

Bligh E.C., Dyer W.J. A Rapid method of total lipid extraction and purification // Can. J. Biochem. Physiol. 1959. Vol. 37. Pp. 911–917.

Christie W.W. Preparation of ester derivatives of fatty acids for chromatographic analysis // Advances in Lipid Meth-odology. Dundee, 1993. Pp. 69–111.

Dobson G., Сhristie W.W. Mass spectrometry of fatty acid derivatives // Eur. J. Lipid Sci. Technol. 2002. Vol. 104. Pp. 36–43.

Wolff R.L., Christie W.W. Structure, practical sources (gymnosperm seeds), gas-chromatographic data (equivalent chain lengths), and mass spectrometric characteristics of all-cis Δ5-olefinic acids // Eur. J. Lipid Sci.Technol. 2002. Vol. 104. Pp. 234–244.

Cartea M.E., Migdal M., Galle A.M., Pelletier G., Guerche P. Comparison of sense and antisense methodologies for modifying the fatty acid composition of arabidopsis oilseed // Plant Sci. 1998. Vol. 136. Pp. 181–194.

Mongrad S., Badoc A., Patouille B., Lacomblez C., Chavent M., Cassagne C., Bessoule J.J. Taxonomy of gymno-spermae: multivariate analyses of leaf fatty acid composition // Phytochemistry. 2001. Vol. 58. Pp. 101–115.

Plattner R.D., Spencer G.F., Kleiman R. cis- Δ5-Polyenoic acids in Larix leptolepis seed oil // Lipids. 1975/ Vol. 10. Pp. 413–416.

Sato M., Seki K., Kita K., Moriguchi Y., Yunoki K., Kofujita H., Ohnishi M. Prominent differences in leaf fatty acid composition in the F1 hybrid compared with parent trees Larix gmelinii var. japonica and L. kaempferi // Biosci Bio-technol Biochem. 2008. Vol. 72. Pp. 2895–2902.

Опубликован
2014-06-10
Как цитировать
[1]
Макаренко, С.П., Шмаков, В.Н., Коненкина, Т.А., Дударева, Л.В. и Константинов, Ю.М. 2014. ЖИРНОКИСЛОТНЫЙ СОСТАВ ЛИПИДОВ КАЛЛУСОВ ДВУХ ВИДОВ ЛИСТВЕННИЦЫ (LARIX GMELINII И LARIX SIBIRICA). Химия растительного сырья. 2 (июн. 2014), 121-127. DOI:https://doi.org/10.14258/jcprm.1402121.
Выпуск
Раздел
Низкомолекулярные соединения