СПЕКТРОФОТОМЕТРИЧЕСКОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ АЛКИЛРЕЗОРЦИНОЛОВ В ЗЕРНЕ МЯГКОЙ ЯРОВОЙ ПШЕНИЦЫ (TRITICUM AESTIVUM L.):

Альфия Исмагильевна Валиева; Антон Николаевич Акулов; Наталья Ивановна Румянцева

doi:10.14258/jcprm.20260318034

Альфия Исмагильевна Валиева Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ КазНЦ РАН https://orcid.org/0000-0003-2988-6098 Email: cell-culture@ya.ru
Антон Николаевич Акулов Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ КазНЦ РАН http://orcid.org/0000-0002-2651-6297 Email: akulov_anton@mail.ru
Наталья Ивановна Румянцева Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ КазНЦ РАН https://orcid.org/0000-0002-0976-4176 Email: nat_rumyantseva@mail.ru

https://doi.org/10.14258/jcprm.20260318034

Ключевые слова: Triticum aestivum, Fast Blue RR, алкилрезорцинолы, ВЭЖХ, катехин, проантоцианидины, спектрофотометрия

Аннотация

Алкилрезорцинолы (АР) – это группа фенольных липидов, локализованных во внешних оболочках зерна пшеницы, они содержатся в цельнозерновых продуктах и оказывают положительное влияние на регуляцию липидного обмена человека. Определение содержания АР в зерне имеет большое значение как при селекции сортов пшеницы для функционального питания, так и при контроле подлинности цельнозерновых продуктов. Спектрофотометрический метод количественного определения АР с использованием диазониевой соли Fast Blue RR отличается простотой и экономичностью, что делает его удобным для анализа большого количества образцов. Однако его применение требует оценки возможного влияния со стороны других фенольных соединений (ФС), присутствующих в зерне. В настоящей работе подобраны оптимальные условия для спектрофотометрического определения АР в цельнозерновой муке (ЦЗМ) мягкой яровой пшеницы (Triticum aestivum L.) краснозерных сортов, содержащих проантоцианидины (ПА). Впервые оценена способность различных ФС зерна пшеницы образовывать окрашенные продукты с Fast Blue RR. Установлено, что катехин, являющийся основной субъединицей ПА пшеницы, взаимодействует с реактивом и при концентрациях выше 5 мкг/мл может влиять на спектрофотометрическое определение АР. Показано, что сопутствующие соединения, экстрагируемые безводным ацетоном из ЦЗМ мягкой яровой пшеницы, в подобранных условиях анализа не оказывают существенного влияния на результаты спектрофотометрического определения АР. Рекомендовано проводить предварительное тестирование растительных экстрактов на содержание свободных катехинов и/или ПА для исключения их возможного влияния на результаты количественной оценки АР. Высокая сходимость данных, полученных при сравнении предложенного метода и ВЭЖХ анализа, подтверждена статистически (коэффициент корреляции r = 0.955, p≤0.001).

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Биографии авторов

Альфия Исмагильевна Валиева, Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ КазНЦ РАН

кандидат биологических наук, научный сотрудник группы «Биология клеток in vitro»

Антон Николаевич Акулов, Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ КазНЦ РАН

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник группы «Биология клеток in vitro»

Наталья Ивановна Румянцева, Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ КазНЦ РАН

кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник, заведующая группой «Биология клеток in vitro»

Литература

Kozubek A., Tyman J.H.P. Chem. Rev., 1999, vol. 99, no. 1, pp. 1–26. https://doi.org/10.1021/cr970464o.

Zabolotneva A.A., Shatova O.P., Sadova A.A., Shestopalov A.V., Roumiantsev S.A. J. Nutr. Metab., 2022, vol. 2022, pp. 1–12. https://doi.org/10.1155/2022/4667607.

Martins T.P. et al. Nat. Prod. Rep., 2019, vol. 36, no. 10, pp. 1437–1461.

Magnucka E.G., Oksińska M.P., Pietr S.J. Applied Sciences, 2022, vol. 12, no. 15, 7735. https://doi.org/10.3390/app12157735.

Kruk J., Aboul-Enein B., Bernstein J., Marchlewicz M. Eur Food Res Technol., 2017, vol. 243, no. 10, pp. 1693–1710. https://doi.org/10.1007/s00217-017-2890-6.

Landberg R., Kamal-Eldin A., Salmenkallio-Marttila M., Rouau X., Åman P. Journal of Cereal Science, 2008, vol. 48, no. 2, pp. 401–406. https://doi.org/10.1016/j.jcs.2007.09.013.

Andersson A.A.M., Kamal-Eldin A., Fraś A., Boros D., Åman P. J. Agric. Food Chem., 2008, vol. 56, pp. 9722–9725. https://doi.org/10.1021/jf8011344.

Zabolotneva A.A., Gaponov A.M., Roumiantsev S.A. et al. IJMS, 2023, vol. 24, no 18, 14206. https://doi.org/10.3390/ijms241814206.

Oishi K., Yamamoto S., Itoh N., Nakao R., Yasumoto Y., Tanaka K., Kikuchi Y., Fukudome S., Okita K., Takano-Ishikawa Y. J. Nutr., 2015, vol. 145, no. 2, pp. 199–206. https://doi.org/10.3945/jn.114.202754.

Landberg R., Marklund M., Kamal-Eldin A., Åman P. J. Funct. Foods, 2014, vol. 7, pp. 77–89. https://doi.org/10.1016/j.jff.2013.09.004.

Sampietro D.A., Vattuone M.A., Catalán C.A.N. Food Chemistry, 2009, vol. 115, no. 3, pp. 1170–1174. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2008.12.086.

Tluscik F., Kozubek A., Mejbaum-Katzenellenbogen W. Acta Soc. Bot. Pol., 1981, vol. 50, no. 4, pp. 645–651.

Sampietro D.A., Jimenez C.M., Belizán M.M., Vattuone M.A., Catalán C.A.N. Food Chemistry, 2013, vol. 141, no. 4, pp. 3546–3551. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.06.069.

Vaughan S.P., Baker J.M., Primavesi L.F. et al. Plant Direct, 2022, vol. 6, no. 10, e453. https://doi.org/10.1002/pld3.453.

Rumyantseva N.I., Valiyeva A.I., Akulov A.N., Askhadullin Dan.F., Askhadullin Dam.F., Vasilova N.Z. Biomika, 2021, vol. 13, no. 3, pp. 254–273. https://doi.org/10.31301/2221-6197.bmcs.2021-17. (in Russ.).

Li Y.-G., Tanner G., Larkin P. The DMACA-HCl protocol and the threshold proanthocyanidin content for bloat safety in forage legumes // J. Sci. Food Agric. 1996, vol. 70, no. 1, pp. 89–101. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0010(199601)70:1%253C89::AID-JSFA470%253E3.0.CO;2-N.

Waldi D. Thin-Layer Chromatography. Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg, 1965, pp. 483–502.

Elder A.S., Coupland J.N., Elias R.J. Food Chemistry, 2021, vol. 346, 128885. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.128885.

Zarnowski R., Suzuki Y. Journal of Food Composition and Analysis, 2004, vol. 17, no. 5, pp. 649–663. https://doi.org/10.1016/j.jfca.2003.09.007.

Dey P.M., Harborne J.B. Methods in plant biochemistry. London, San Diego, New York: Academic press, 1989, 565 p.

Kallithraka S., Garcia-Viguera C., Bridle P., Bakker J. Phytochemical Analysis, 1995, vol. 6, no 5, pp. 265–267. https://doi.org/10.1002/pca.2800060509.

Ross A.B., Åman P., Andersson R., Kamal-Eldin A. Journal of Chromatography A, 2004, vol. 1054, no. 1–2, pp. 157–164. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2004.04.020.